Fairyfly - Fairyfly
| Hadas |
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| Mymar sp. (mujer) | |
clasificación cientifica 
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| Reino: | Animalia |
| Filo: | Artrópodos |
| Clase: | Insecta |
| Pedido: | Himenópteros |
| Superfamilia: | Chalcidoidea |
| Familia: |
Mymaridae Haliday , 1833 |
| Tipo de género | |
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Mymar
Curtis , 1829
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| Genera | |
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Ver texto |
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| Diversidad | |
| 0–2 subfamilias c. 100 géneros c. 1.400 especies |
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Los Mymaridae , comúnmente conocidos como moscas de las hadas o avispas de las hadas , son una familia de avispas calcidas que se encuentran en las regiones templadas y tropicales de todo el mundo. La familia contiene alrededor de 100 géneros con 1400 especies.
Las moscas de hadas son insectos muy diminutos, como la mayoría de las avispas cálcidas, que en su mayoría miden entre 0,5 y 1,0 mm (0,020 a 0,039 pulgadas) de largo. Incluyen el insecto más pequeño conocido del mundo , con una longitud corporal de solo 0,139 mm (0,0055 pulgadas), y el insecto volador más pequeño conocido , de solo 0,15 mm (0,0059 pulgadas) de largo. Por lo general, tienen cuerpos no metálicos de color negro, marrón o amarillo. Las antenas de las hembras tienen la punta distintiva de segmentos en forma de garrote, mientras que las antenas masculinas tienen forma de hilo. Sus alas suelen ser delgadas y poseen cerdas largas, lo que les da una apariencia peluda o plumosa, aunque algunas especies pueden tener alas rechonchas muy reducidas o carecer por completo de alas. Se pueden distinguir de otras avispas calcidas por el patrón de suturas en forma de H en la parte frontal de la cabeza.
Las moscas de hadas son algunas de las avispas cálcidas más comunes, pero los humanos rara vez las notan debido a sus tamaños extremadamente pequeños. Su esperanza de vida adulta es muy corta, por lo general solo unos pocos días. Todas las moscas de hadas conocidas son parasitoides de los huevos de otros insectos, y varias especies se han utilizado con éxito como agentes biológicos de control de plagas .
El registro fósil de las moscas de hadas se extiende al menos desde la edad del Albiano (alrededor de 107 millones de años ) del Cretácico Inferior .
Taxonomía
La familia Mymaridae fue establecida por primera vez en 1833 por el entomólogo irlandés Alexander Henry Haliday . Haliday y dos amigos cercanos, John Curtis y Francis Walker , entomólogos respetados por derecho propio, fueron influyentes en los primeros estudios de los himenópteros en el siglo XIX.
Historia
Haliday describió originalmente a las moscas de hadas como la tribu "Mymares" de la familia "Chalcides". Basó sus descripciones en el género tipo Mymar , descrito por John Curtis en 1829.
Los primeros intentos de clasificación de Walker trataron al grupo como un género y clasificaron todas las demás moscas de hadas conocidas como subgéneros . Walker (que era famoso por sus deficiencias en la nomenclatura sistemática ) admitió más tarde la clasificación de Haliday en una carta en 1839 y solicitó la ayuda de Haliday para clasificar las avispas cálcidas recolectadas por Charles Darwin en su viaje en el HMS Beagle . "Mymares", así como otras "tribus", fueron elevadas al rango de familia (como Mymaridae) por Haliday en 1839.
Haliday describió a las moscas de hadas como "los mismos átomos del orden de los himenópteros" y destacó la belleza de sus alas cuando se las observa con el microscopio. Estas características de las moscas de las hadas también las hicieron populares entre los entomólogos y microscopistas de finales del siglo XIX y principios del XX. Los especímenes de moscas de hadas bellamente montados del microscopista inglés Fred Enock de principios del siglo XX son posiblemente las más famosas de las colecciones.
Etimología
El nombre genérico Mymar (y por extensión, Mymaridae) fue derivado por Curtis de la palabra griega μΰμαρ ( mymar ), una variante eólica del griego estándar μῶμος ( mōmos , "mancha" o "mancha").
Clasificación
Los Mymaridae son los miembros más primitivos de la superfamilia de avispas cálcidas ( Chalcidoidea ). Aproximadamente 1424 especies de moscas de hadas se agrupan en aproximadamente 100 géneros. De los géneros de moscas de las hadas existentes, Eustochomorpha es el más primitivo. Los géneros más grandes son Anagrus , Anaphes , Gonatocerus y Polynema , que comprenden alrededor de la mitad de todas las especies conocidas. Son las moscas de hadas más comunes, seguidas de Alaptus , Camptoptera , Erythmelus , Ooctonus y Stethynium , que constituyen una cuarta parte de las especies conocidas. Se considera que los Mymaridae son monofiléticos , pero sus relaciones exactas con otras avispas calcidas siguen sin estar claras.
No se han reconocido subfamilias comúnmente aceptadas, pero hay dos propuestas notables. Annecke y Doutte (1961) propusieron las subfamilias Alaptinae y Mymarinae basándose en la morfología de los gásters . Peck y col. (1964) propuso las subfamilias Gonatocerinae y Mymarinae basándose en el número de segmentos (tarsómeros) en los tarsos. Ambos sistemas incluían más categorías tribales. También se propuso una subfamilia fósil para un género recuperado del ámbar canadiense.
Descripción
Las moscas de hadas son insectos muy pequeños. Tienen longitudes de cuerpo de 0,13 a 5,4 mm (0,0051 a 0,2126 pulgadas), normalmente de 0,5 a 1,0 mm (0,020 a 0,039 pulgadas). Sus cuerpos suelen ser de color negro, marrón o amarillo, sin la coloración metálica de algunas otras avispas. Se pueden distinguir de otras avispas cálcidas por tener un patrón de suturas en forma de H, conocido como trabéculas o carinas, debajo de los ocelos frontales y los márgenes internos del ojo. En raras ocasiones, las suturas también pueden extenderse detrás de los ocelos. Las moscas de hadas tienen antenas largas , al menos tan largas como la cabeza y el mesosoma (parte media del cuerpo). Los tórulos de las antenas (cuencas de las antenas) se colocan en lo alto de la cabeza y cerca de los márgenes de los ojos. Están separados por una distancia de tres a cinco veces su propio diámetro. Por el contrario, las antenas de otras avispas cálcidas están separadas solo por un diámetro. En las hembras, las antenas están rematadas con segmentos en forma de garrote conocidos como clava. En los machos, las antenas son filiformes ( filiformes ).
La mayoría de las moscas de las hadas poseen alas con cerdas largas (setas marginales) en los bordes. Las alas anteriores suelen tener hipoqueta. Se trata de pequeñas cerdas (setas) que apuntan claramente hacia atrás en la superficie ventral de la membrana del ala.
Las moscas de hadas exhiben una variación considerable en la forma de sus alas en comparación con otras avispas cálcidas . Las alas completamente desarrolladas (macropterous) de las moscas de hadas son normalmente planas con puntas redondeadas y son varias veces más largas que anchas. Este tipo de alas generalmente exhiben variaciones interespecíficas e intergenéricas en términos de la relación de largo a ancho y la forma del contorno del ala (especialmente de las puntas y los márgenes posteriores) de las alas anteriores. En algunas especies, las alas delanteras son relativamente anchas, como en el género Paranaphoidea, que tienen alas delanteras sólo dos veces y media más largas que anchas. En otras especies, las alas anteriores son extremadamente estrechas, como en Cleruchus bicilliatus, cuyas alas anteriores son unas treinta veces más largas que anchas.
La curvatura de las alas anteriores, tal que es claramente convexa o con forma de cúpula, también es exhibida por al menos una especie de los géneros Cremnomymar , Mymarilla , Parapolynema y Richteria . La mayoría de estas especies habitan en ambientes particularmente duros y barridos por el viento, y la curvatura puede ayudar a absorber y retener el calor o evitar que las moscas de las hadas sean arrastradas.
Las alas traseras son pediculadas (pecioladas) y muy estrechas. No exhiben mucha variación, en contraste con las alas anteriores. Pueden variar desde estrechos y filiformes (como en los miembros del género Mymar ) hasta relativamente anchos (como en los miembros del género Paranaphoidea ). En raras ocasiones, las alas posteriores también pueden presentar curvatura, con márgenes anterior y posterior convexos o cóncavos.
Algunas moscas de hadas poseen alas ligeramente reducidas (braquipteras) a muy reducidas (micropteras), mientras que otras pueden incluso estar completamente sin alas (ápteras). La reducción o ausencia de alas generalmente es exhibida por al menos un sexo (generalmente la hembra) de especies que buscan huevos hospederos en áreas confinadas (como hojarasca, suelo o los túbulos de hongos de soporte ). La reducción o ausencia de alas también se manifiesta en especies que habitan en hábitats ventosos como islas oceánicas o grandes alturas, en particular las especies endémicas que se encuentran en hábitats aislados o se encuentran lejos del continente más cercano. En estos hábitats, las alas solo serían un obstáculo para las moscas de hadas, por lo que están fuertemente seleccionadas en la evolución . Por ejemplo, las tres especies conocidas de moscas de hadas que se encuentran en las islas del extremo sur de Campbell y Auckland en el Pacífico suroeste y Georgia del Sur en el Atlántico sur , así como el 20% de la fauna de moscas de hadas en las islas Juan Fernández , Isla Norfolk y Lord Howe Island , no tienen alas o tienen alas cortas. Si bien las especies sin alas y de alas cortas también se pueden encontrar en islas cercanas a continentes y en hábitats continentales, generalmente constituyen solo un pequeño porcentaje del número total de especies.
Debido a su pequeño tamaño, las moscas de hadas a veces pueden confundirse con miembros de las familias Aphelinidae y Trichogrammatidae , pero los miembros de estas otras familias pueden distinguirse fácilmente por tener antenas mucho más cortas.
Distribución y hábitat
Las moscas de hadas son algunas de las avispas cálcidas más comunes, pero debido a su diminuto tamaño, los humanos rara vez las notan. Esta aparente invisibilidad, sus cuerpos delicados y sus alas con flecos de pelo les han valido su nombre común.
Las moscas de hadas se encuentran en regiones templadas y tropicales de todo el mundo. El mayor número de especies se puede encontrar en los bosques tropicales, y la mayor diversidad de géneros se encuentra en el hemisferio sur (América del Sur, Nueva Zelanda y Australia). En el Neártico (América del Norte), solo se encuentran alrededor de 28 (de alrededor de 100) géneros y 120 (de alrededor de 1424) especies.
Las moscas de hadas pueden sobrevivir en todo tipo de hábitats terrestres, desde desiertos hasta selvas tropicales . También se sabe que al menos cinco especies son acuáticas y habitan en estanques y arroyos de agua dulce. Entre estos se encuentra Caraphractus cinctus , que usa sus alas como remos para nadar. Pueden permanecer bajo el agua hasta 15 días. Debido a su pequeño tamaño, tienen que salir del agua trepando por los tallos de las plantas que sobresalen de la superficie, ya que de otro modo no podrían romper la tensión superficial del agua.
Ecología
Todas las moscas de hadas conocidas son parasitoides de los huevos de otros insectos. Estos huevos se depositan comúnmente en lugares ocultos, como en tejidos vegetales o bajo tierra. No parecen ser específicos de una especie cuando se trata de elegir hospedadores . Se sabe que algunas especies parasitan insectos de varias familias de un solo orden . Sus huéspedes más comúnmente observados son insectos pertenecientes al orden Hemiptera (chinches verdaderos), especialmente Auchenorrhyncha ( saltahojas , cigarras y aliados) y Coccoidea ( cochinillas ), pero esto podría deberse a que estos grupos simplemente están mejor estudiados. Otras órdenes de hospedadores importantes incluyen Coleoptera (escarabajos), Diptera (moscas verdaderas), Odonata ( libélulas y aliados), Psocoptera ( piojos y aliados) y Thysanoptera (trips). Los hospedadores son conocidos definitivamente solo por una cuarta parte de los géneros conocidos.
Las moscas de hadas incluyen el insecto más pequeño conocido, Dicopomorpha echmepterygis de Costa Rica, cuyos machos miden solo 0,139 mm (0,0055 pulgadas) de largo. No tienen alas ni ojos, sus bocas son meros agujeros y sus antenas son simplemente manchas esféricas. Los extremos de sus patas se han modificado en ventosas para agarrar a las hembras el tiempo suficiente para fertilizarlas. Sus cuerpos son más pequeños que un paramecio unicelular . Cuatro hombres, alineados de un extremo a otro, abarcarían casi el ancho de un punto al final de una oración impresa típica. Las hembras de la especie, sin embargo, son las típicas moscas de hadas y son mucho más grandes. El insecto volador más pequeño es también un mymarid, Kikiki huna de Hawai , que mide 0,15 mm (0,0059 pulgadas) de largo.
Historia de vida
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Se sabe muy poco de las historias de vida de las moscas de las hadas, ya que solo unas pocas especies se han observado extensamente. Suelen ser solitarios, pero a veces pueden ser gregarios.
El apareamiento ocurre inmediatamente después de la emergencia. No se han observado comportamientos de cortejo y cada hembra es fertilizada por un solo macho. Una vez fertilizados, los machos pierden interés en la hembra y la hembra también pierde interés en más apareamiento. En Prestwichia aquatica , se ha informado que el apareamiento ocurre antes de la emergencia de las hembras de los huevos del hospedador. En P. aquatica , Anagres incarnatus , A. armatus y Anaphes nipponicus , las hembras superan en número a los machos en cada nidada; de dos a 20 hembras por cada macho. En Polynema striaticorne , ocurre lo contrario, los machos superan en número a las hembras en una proporción de tres o más a uno. En Anagrus atomus , A. frequens , A. optabilis , A. perforator y Polynema euchariformes , las hembras son capaces de reproducirse sin machos ( partenogénesis ), aunque a veces se pueden encontrar machos dentro de las crías.
La esperanza de vida adulta de las moscas de hadas es muy corta. Los adultos de Stethynium (machos y hembras) pueden vivir solo uno o dos días. En Anagrus , dependiendo de la especie, la vida útil varía de tres a 11 días. Cada hembra fertilizada (o partenogénica) puede poner un máximo de unos 100 huevos. El acceso a los alimentos puede prolongar la vida útil y aumentar la fecundidad. En Gonatocerus, si no se encuentran hospedadores, las hembras pueden reabsorber los huevos, reteniendo energía para vivir más tiempo y aumentando las posibilidades de encontrar un hospedador.
Después de emerger, las hembras buscan rápidamente huevos hospedadores adecuados golpeando sus antenas sobre los tallos o cortezas de las plantas. Cuando se encuentra una cicatriz reveladora dejada por los insectos que ponen huevos, una hembra insertará sus antenas en el hueco y verificará si los huevos son adecuados. Si es así, empujará su ovipositor en todos los huevos y pondrá sus propios huevos adentro en rápida sucesión. Mantiene el contacto con cada uno de los huevos con sus antenas mientras hace esto.
La mayoría de las moscas de hadas requieren un desarrollo suficiente en los embriones dentro de los huevos, pero no demasiado, antes de atacarlos, ya que su descendencia no puede madurar si los huevos son demasiado nuevos o si los embriones en el interior están demasiado avanzados. Los embriones hospedadores más viejos son aparentemente más difíciles de digerir para las larvas de la mosca de las hadas, pero hay excepciones. Algunas especies de Polynema pueden atacar a los embriones en varias etapas de desarrollo. Se ha registrado que producen tres generaciones sucesivas en una sola cría de la saltamontes Ceresa .
Todas las moscas de hadas poseen huevos elipsoides con un tallo largo y afilado. Se desarrollan rápidamente una vez puestas y pueden eclosionar en seis horas a dos días. Se pueden producir varias generaciones en un año, a menudo en diferentes hospedadores.
Las moscas de hadas tienen de dos a cuatro estadios larvarios, todos aparentemente sin espiráculos ni tráqueas funcionales . La metamorfosis ocurre completamente dentro del huevo huésped. Son peculiares de los insectos que exhiben una metamorfosis completa (holometabolismo) porque producen dos tipos distintos de estadios larvales antes de la pupación . En algunas moscas de hadas, como Anaphes , el primer estadio es una larva "mymmariform" muy móvil. El segundo estadio, sin embargo, es una larva en forma de saco completamente inmóvil sin segmentos, espinas o setas discernibles. En otras moscas de hadas, como Anagrus , esto se invierte. El primer estadio es inmóvil, mientras que el segundo estadio es una larva "histriobdellid" muy distintiva y muy activa. Al menos un estadio de las larvas es capaz de invernar cuando se pone en estaciones más frías.
Importancia economica
Las moscas de hadas se han utilizado para el control biológico de diversas plagas de cultivos. Son especialmente valorados por su capacidad para localizar los huevos de sus anfitriones. De las moscas de las hadas, el género cosmopolita Anagrus es el más prometedor, ya que puede parasitar una amplia gama de huéspedes. Se conocen al menos diez casos de introducciones exitosas de moscas de hadas para controlar plagas.
En Hawái , Anagrus optabilis se ha utilizado con éxito para controlar el saltamontes de la caña de azúcar ( Perkinsiella saccharicida ). Anagrus epos también se ha utilizado anteriormente de forma eficaz contra el saltahojas de la uva ( Erythroneura elegans ) y el saltahojas de la uva variegada ( Erythroneura variabilis ). Al principio, tuvo un éxito limitado, ya que las avispas morían en invierno por falta de huéspedes. La plantación de moras silvestres ( Rubus spp.) Cerca de viñedos en California trajo consigo la saltahojas de mora ( Dikrella cruentata ). Aunque no es una plaga, D. cruentata demostró ser un huésped suficiente para A. epos en invierno, lo que les permitió sobrevivir hasta el año siguiente. También se ha demostrado que son capaces de pasar el invierno en chicharritas ( Edwardsiana prunicola ).
Gonatocerus triguttatus , Gonatocerus tuberculifemur y Anagrus epos (que probablemente es un complejo de especies ) también se estudiaron para su posible uso en el control de los francotiradores de alas vidriosas ( Homalodisca vitripennis ) en California . Gonatocerus triguttatus y Gonatocerus ashmeadi finalmente se introdujeron en California en 2000. Resultó ser un gran éxito, provocando una disminución de aproximadamente el 90% en las poblaciones de francotiradores de alas vidriosas.
En 2005, Gonatocerus ashmeadi se utilizó contra francotiradores invasores de alas vidriosas en Tahití y Moorea de la Polinesia Francesa . Nuevamente, fue muy efectivo, reduciendo la densidad de plagas en aproximadamente un 95% en solo un año después de la introducción. Posteriormente también fue lanzado en las Islas Sociedad , las Marquesas y las Islas Australes , donde se obtuvieron resultados similares contra francotiradores de alas vidriosas.
En Sudáfrica, Anaphes nitens se introdujo con mucho éxito para controlar el escarabajo del hocico del eucalipto ( Gonipterus scutellatus ). En Australia e Israel, miembros del género Stethynium fueron investigados en 2006 como posibles agentes de control biológico de plagas de cultivos que forman agallas, como Ophelimus maskelli .
Registro fósil
Las moscas de hadas están bien representadas en inclusiones fósiles de ámbar , copal y fósiles de compresión . Sus fósiles se han encontrado desde el Cretácico Temprano hasta la época del Mioceno . De hecho, es la única familia de avispas cálcidas que se conoce definitivamente que se remonta al período Cretácico .
Fernand Anatole Meunier describió por primera vez los fósiles paleógenos y neógenos de moscas de hadas en 1901 . Describió fósiles de moscas de hadas del ámbar báltico , la mayoría de ellas del Eoceno (55 a 37 millones de años). En 1973, Richard L. Doutt describió varias especies del ámbar Burdigalian (20 a 15 millones de años) de México. En 1983, Csaba Thuróczy describió otra especie del ámbar báltico, esta vez del Oligoceno (33 a 23 millones de años). Y en 2011, John T. Huber y Dale Greenwalt describen fósiles fairyfly de los esquistos bituminosos de la Formación Kishenehn ( Luteciano edad) de Montana . Estos comprendían dos nuevos géneros y seis especies.
Las moscas de hadas del Cretácico son mucho más raras. En 1975, Carl M. Yoshimoto describió cuatro géneros de moscas de hadas del Cretácico de Canadá. En 2011, John T. Huber y George Poinar Jr.describieron el género Myanmymar del ámbar birmano . Se remonta a la edad del Cenomaniano Inferior (alrededor de 100 millones de años) del Cretácico Superior, y es la mosca de hadas (y avispa calcida) más antigua conocida. Son sorprendentemente muy similares a los géneros modernos, aunque con un mayor número de segmentos flagelares y venas de las alas anteriores más largas. Las características del fósil (teniendo en cuenta los descubrimientos anteriores de Yoshimoto) los llevaron a concluir que las hadas pueden haber existido mucho antes que Myanmymar , o pueden haberse diversificado rápidamente durante ese período de tiempo.
Genera
Mymaridae incluye los géneros que se enumeran a continuación. Allomymar y Metanthemus se han transferido a la familia Aphelinidae . El género fósil Protooctonus se ha transferido a la familia Mymarommatidae y ahora se considera sinónimo de Archaeromma . Nesopolynema , Oncomymar y Scolopsopteron fueron sinonimizados con el género Cremnomymar en 2013, y sus especies ahora se clasifican en este último. Shillingsworthia también está excluido, ya que era un concepto hipotético irónico de una especie del planeta Júpiter , "descrito" por Alexandre Arsène Girault en 1920 para desacreditar a su colega Johann Francis Illingworth .
Los géneros marcados con † están extintos.
Géneros existentes
- Acanthomymar Subba Rao , 1970
- Acmopolynema Ogloblin, 1946
- Acmotemnus Noyes y Valentine, 1989
- Agalmopolynema Ogloblin, 1960
- Alaptus Ferrière, 1930
- Allanagrus Noyes y Valentine, 1989
- Allarescon Noyes y Valentine, 1989
- Anagroidea Girault, 1915
- Anagrus Haliday, 1833
- Anaphes Haliday, 1833
- Anneckia Subba Rao, 1970
- Apoxypteron Noyes y Valentine, 1989
- Arescon Walker, 1846
- Australomymar Girault, 1929
- Baburia Hedqvist, 2004
- Bakkendorfia Mathot, 1966
- Boccacciomymar Triapitysn y Berezovskiy, 2007
- Borneomymar Huber, 2002
- Boudiennyia Girault, 1937
- Bruchomymar Ogloblin, 1939
- Caenomymar Yoshimoto, 1990
- Callodicopus Ogloblin, 1955
- Camptoptera Förster, 1856
- Camptopteroides Viggiani, 1974
- Caminante de Caraphractus , 1846
- Ceratanaphes Noyes y Valentine, 1989
- Chaetomymar Ogloblin, 1946
- Chrysoctonus Mathot, 1966
- Cleruchoides Lin y Huber, 2007
- Cleruchus Enock, 1909
- Cnecomymar Ogloblin, 1963
- Cremnomymar Ogloblin, 1952
- Cybomymar Noyes y Valentine, 1989
- Dicopomorpha Ogloblin, 1955
- Dicopus Enock, 1909
- Dorya Noyes y Valentine, 1989
- Entrichopteris Yoshimoto, 1990
- Eofoersteria Mathot, 1966
- Erdosiella Soyka, 1956
- Erythmelus Enock, 1909
- Eubroncus Yoshimoto, Kozlov y Trjapitzin, 1972
- Eucleruchus Ogloblin, 1940
- Eustochomorpha Girault, 1915
- Eustochus Haliday, 1833.
- Formicomymar Yoshimoto, 1990
- Gahanopsis Ogloblin, 1946
- Ganomymar De Santis, 1972
- Gonatocerus Nees, 1834
- Haplochaeta Noyes y Valentine, 1989
- Himopolynema Taguchi, 1977
- Idiocentrus Gahan, 1927
- Ischiodasys Noyes y Valentine, 1989
- Kalopolynema Ogloblin, 1960
- Kikiki Huber y Beardsley, 2000
- Kompsomymar Lin y Huber, 2007
- Krokella Huber, 1993
- Kubja Subba Rao, 1984
- Litus Haliday, 1833
- Macrocamptoptera Girault, 1910
- Malfattia Meunier, 1901
- Mimalaptus Noyes y Valentine, 1989
- Mymar Curtis, 1829
- Mymarilla Westwood, 1879
- Myrmecomymar Yoshimoto, 1990
- Narayanella Subba Rao, 1976
- Neolitus Ogloblin, 1935
- Neomymar Crawford, 1913
- Neostethynium Ogloblin, 1964
- Neserythmelus Noyes y Valentine, 1989
- Nesomymar Valentine, 1971
- Nesopatasson Valentine, 1971
- Notomymar Doutt y Yoshimoto, 1970
- Omyomymar Schauff, 1983
- Ooctonus Haliday, 1833.
- Waterhouse Palaeoneura , 1915
- Palaeopatasson Witsack, 1986
- Paracmotemnus Noyes y Valentine, 1989
- Paranaphoidea Girault, 1913
- Parapolynema Fidalgo, 1982
- Parastethynium Lin & Huber en Lin, Huber & La Salle, 2007
- Platyfrons Yoshimoto, 1990
- Platypolynema Ogloblin, 1960
- Platystethynium Ogloblin, 1946
- Polynema Haliday, 1833
- Polynemoidea Girault, 1913
- Polynemula Ogloblin, 1967
- Prionaphes Hincks, 1961
- Pseudanaphes Noyes y Valentine, 1989
- Pseudocleruchus Donev y Huber, 2002
- Ptilomymar Annecke y Doutt, 1961
- Restisoma Yoshimoto, 1990
- Richteria Girault, 1920
- Esquizofragma Ogloblin, 1949
- Scleromymar Noyes y Valentine, 1989
- Steganogaster Noyes y Valentine, 1989
- Stephanocampta Mathot, 1966
- Stephanodes Enock, 1909
- Stethynium Enock, 1909
- Tanyostethium Yoshimoto, 1990
- Tetrapolynema Ogloblin, 1946
- Tinkerbella Huber y Noyes, 2013
- Zelanaphes Noyes y Valentine, 1989
Géneros fósiles
Estos géneros fósiles se clasifican en Mymaridae:
- † Carpenteriana Yoshimoto, 1975 ámbar canadiense , Campaniano
- † Enneagmus Yoshimoto, 1975 ámbar canadiense, Campaniano
- † Eoanaphes Huber en Huber & Greenwalt, 2011 Kishenehn Formation , Montana, Lutetian
- † Eoeustochus Huber en Huber & Greenwalt, 2011 Kishenehn Formation, Montana, Lutetian
- † Macalpinia Yoshimoto, 1975 ámbar canadiense, Campaniano
- † Myanmymar Huber en Huber & Poinar, 2011 ámbar birmano , cenomaniano
- † Triadomerus Yoshimoto, 1975 ámbar canadiense, Campaniano
Recolección y preservación
A pesar de su relativa abundancia, las moscas de hadas son impopulares entre los recolectores de insectos modernos debido a la gran dificultad para recolectarlas. Como una de las familias de insectos menos conocidas, una gran cantidad de información todavía está esperando ser descubierta sobre las moscas de hadas. Esta es un área de la entomología en la que un naturalista aficionado aún puede hacer contribuciones significativas.
En el siglo XIX, Curtis describió los métodos por los cuales Haliday recolectaba moscas de hadas de la siguiente manera:
Los himenópteros diminutos se recolectan mejor golpeando y barriendo con una red hecha de gasa fina, y el Sr. Haliday me recomienda que los recolecte en púas y luego que vacíe su contenido en agua caliente, por lo que sus alas son naturalmente expandido; luego introduciendo una cartulina debajo de ellas para sacarlas del agua, arreglando las patas y alas cuando sea necesario con un lápiz de pelo de camello, y dejándolas sobre la cartulina hasta que estén secas, luego se pueden quitar con una navaja, y engomado sobre las puntas de pequeños trozos de papel de dibujo o cartulina de forma triangular alargada.
- John Curtis , Entomología británica vol. 7 (1830)
El mejor método de recolección moderno es usar trampas Malaise . Requiere poco mantenimiento y puede recolectar insectos en gran abundancia. Otros métodos efectivos incluyen trampas amarillas , redes de barrido y trampas de succión . La recolección directa de la hojarasca con embudos Berlese también puede dar como resultado muestras que no se pueden recolectar por otros medios.
La crianza es también otro método que puede traer la mayor cantidad de recompensas. Esto se puede hacer con huevos de hospedadores silvestres o huevos de hospedadores preparados en laboratorio que se exponen en hábitats adecuados en el exterior. Luego, pueden tomarse después de que haya pasado una cantidad de tiempo suficiente y examinarse en busca de moscas de hadas en desarrollo. Con este método, es posible observar la historia de vida y determinar los huéspedes de especies particulares de moscas de hadas descubiertas.
La preservación es un problema para las moscas de hadas (y otras pequeñas avispas cálcidas). Sus diminutos tamaños requieren métodos especiales. Las muestras deben secarse, si se recogen en húmedo, por ejemplo, si se utiliza alcohol etílico como agente letal . El secado puede hacer que las muestras se vuelvan extremadamente frágiles, por lo que también se debe tener cuidado adicional para no desintegrarlas. El montaje de muestras (preferiblemente en portaobjetos permanentes) también requiere mucho tiempo y práctica. Están engomados o pegados en tarjetas, ya que no se pueden montar en alfileres como insectos más grandes.